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Nº Horas: |
780
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Titulación: |
Título propio |
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Bolsa de Trabajo: |
Este curso tiene bolsa de trabajo |
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Salida Laboral: |
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consultar |
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Objetivos: |
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El objetivo final del máster es que el alumno cuente con una base sólida que le permita una rápida adaptación a cualquier laboratorio o empresa de procesos biotecnológicos, en la que pueda responsabilizarse tanto de las tareas cotidianas, como del desarrollo de nuevas metodologías en cualquier proceso o proyecto biotecnológico. |
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Metodología: |
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Programa: |
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La biotecnología: historia, bioética y legislación (20 h)
1. La biotecnología como concepto
2. Historia de la biotecnología. Los hechos biotecnológicos más remarcables
3. Etapas históricas de la biotecnología
4. Momento actual de la biotecnología
5. Aplicación de la biotecnología por sectores y su aportación al desarrollo científico-técnico
6. La legislación aplicable a los procesos biotecnológicos: ley 9/2003 y real decreto 178/2004
7. la bioética
Proyectos científico-técnicos en biotecnología (20h)
1.Definición de proyecto científico: conceptos y objetivos
2. La financiación de proyectos científicos
3. Las administraciones públicas, asociaciones privadas y otros entes de financiación
4. Presentación de los proyectos: convocatorias y normativa de presentación
5. La presentación de los resultados y las justificaciones de los proyectos subvencionados/financiados
Patentes (20h)
1. La directiva 98/44 CEE
2. Legislación española sobre patentes: ley 11/86
3. La patentabilidad de los resultados de investigación y desarrollo
4. El secreto industrial: la no divulgación de los datos científicos
5. La venta de los resultados científicos: los royalties
Genómica (40 h)
1. Introducción y objetivos de la genómica
2. Adquisición de cepas, extracción y purificación de los ácidos nucleicos: DNA, RNA de virus, bacterias, arqueobacterias, plantas, animales
3. Técnicas de cuantificación, análisis, electroforesis, adquisición de imagenes...
4. Métodos de amplificación de los ácidos nucleicos: Real time PCR, RT-PCR, PCR
5. Marcaje de DNA y producción de sondas
6. Enzimas de restricción, ligaciones de fragmentos
7. Métodos de clonage:
a. Vectores y huéspedes (por expresión constitutiva o inducible)
b. Procariotas y eucariotas (E.coli, Bacillus, Pichia, Saccaromyces…)
c. Clonage de DNA y cDNA
d. Métodos avanzados de clonage: topo TA , topo D, Gateway technology
8. Métodos de transformación: electroporación, esferoblastos con zimoliasa, competencia química con cloruro de calcio
9. Métodos de análisis de transformantes: PCR colonial, extracción plasmídica (mini, midi, maxi) y restricción, PCR de secuenciación
10. Mutagénesis dirigida y al azar
Proteómica (40 h)
1. Introducción a la proteómica.
a. Concepto de proteoma.
b. Definición y orígenes de la proteómica.
c. Tecnología de la proteómica. Tipos de estudios proteómicos.
d. Proteómica de expresión, proteómica del mapa celular y proteómica funcional.
2. Técnicas de separación de proteínas.
a. Electroforesis: SDS-PAGE y 2D-PAGE.
b. Detección de proteínas en geles 2-D.
c. Análisis de imágenes.
d. Utilización de programas informáticos.
3. Secuenciación de proteínas por degradación de Edman.
4. La Espectrometria de Masas.
a. Tipos de espectrómetros.
b. Métodos de ionización.
5. Identificación de proteínas
a. mediante imprenta peptídica (Digestión-MALDI/fingerprinting).
b. por imprenta peptídica sumadas a la fragmentación de secuencias peptídicas (Digestión-MALDI-MS-MS/MS).
c. Identificación de secuencias peptídicas en muestras no complejas por cromatografía líquida combinada a espectrometría de masas con fuente nanoeletrospray (Digestión-nanoLC-MS/MS).
d. Análisis de muestras complejas mediante cromatografia líquida multidimensional.
e. Identificación de secuencias peptídicas por nano ES-MS/MS.
f. Obtención de espectros de fragmentación por electrospray (ESI-MS/MS).
6. Análisis de las modificaciones post-traduccionales de proteínas.
7. Nuevas tecnologías para el análisis cuantitativo de la expresión diferencial de proteínas, utilizando marcadores fluorescentes (DIGE) e isótopos estables (ICAT, SILAC e ITRAq)
Procesos biotecnológicos (50 h)
1. Microbiología básica y laboratorio químico básico.
2. Técnicas básicas de microbiología (esterilización, producción de medios y reactivos, riesgo biológico, aislamiento y recuento, banco de cepas, revivificación de liòfilizados, uv-visible).
3. Técnicas básicas del laboratorio químico: pH, disolventes, extracciones, evaporaciones, desecación de disolventes residuales, TLC.
4. Biocatálisis: enzimas comerciales, producción de enzimas, tipos de reacciones, setting de reacciones, optimitzación de la reacción, diseño experimental, disolventes.
5. Biotransformaciones: organismos salvajes y de colección, tipos de reacciones, necesidad de cofactores, células enteras, vivas, no-proliferantes, optimización de medios, diseño experimental y optimización, disolventes, toxicidad.
6. Biorreactores: tipos de reactores, control e instrumentación, esterilización.
7. Procesos de extracción,purificación y caracterización de productos químicos y/o biològicos:
a. Centrifugación, extracciones, evaporaciones, columnas gel filtración, intercambio iónico, interacción hidrofóbica, IMAC, HPLC preparativo, PAGE, western-blot, FPLC, TLC, HPLC-MS, GC-MS, RMN, IR, UV.
La calidad de los productos biotecnológicos (40h)
1. Introducción a la normativa GLP
2. Introducción a la normativa GMP
3. Introducción a la normativa ISO 17025
4. Introducción a la normativa ISO 9000
5. Introducción a la normativa ISO 14000
6. Introducción a la normativa ISO 22000
7. Introducción a la normativa ISO 166000
Bioinformática (50 h)
1. Introducción a la bioinformática
2. Bases de datos moleculares
3. Análisis de secuencias
4. Genómica
5. SNP y QTL
6. Arrays de DNA y proteínas
7. Proteómica
8. Predicción de estructuras
9. Interacción molécula-proteína
Prácticas en el laboratorio (100h)
1. Prevención de riesgos laborales en el laboratorio.
2. Adaptación del alumno en el laboratorio biotecnologico.
3. Aprendizaje de las técnicas biotecnológicas básicas.
4. Gestión de los residuos generados en el laboratorio.
MÓDULO PRÁCTICAS EN EMPRESA O GRUPO EXPERIMENTAL
De las opciones se seleccionará una dependiendo de la disponibilidad del centro de trabajo que acoja al alumno y de la disponibilidad del propio alumno:
1. Prácticas en empresa.
2. Prácticas en grupo experimental.
3. Proyecto innovador de final de curso.
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Requisitos de acceso: |
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Licenciados o ingenieros con conocimientos en algunas de las siguientes áreas: Biotecnología, Biología, Farmacia, Alimentación y/o Veterinaria. |
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Observaciones: |
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INICIO
2 de febrero de 2009
FINAL
1 de julio de 2009
DURACIÓN
Total: 780 horas (65% experimental)
Formación en IUCT: 380 horas. (280 teóricas y 100 prácticas en laboratorio)
Prácticas en empresa, centros de I+D o proyecto final: 400 h.
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